草甘 TW-PCD2000柱后衍生设备检测方案书
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产品详情
“草甘 TW-PCD2000柱后衍生设备检测方案书”参数说明
是否有现货: | 是 | 认证: | 泰特仪器 |
品牌: | 泰特仪器 | 加工定制: | 是 |
测量范围: | 草甘 柱后衍生 | 测量精度: | ±0.1 |
分辨率: | ±0.1 | 电源电压: | 220v |
用途: | 草甘 柱后衍生 | 型号: | TW-PCD2000 |
规格: | 套 | 商标: | 泰特仪器 |
包装: | 纸箱 | 产量: | 1000 |
“草甘 TW-PCD2000柱后衍生设备检测方案书”详细介绍
草苷 和其代谢物
AMPA
的测定,达到并超过环境保护署(
EPA
)
547
方法要求的准确度与灵敏度。
草苷 是一种广谱 。它广泛用于农业,所以存在于饮用水中。一种灵敏的分析方法被开发用来分析草苷 和其基本代谢物甲氨 的水平。
泰特的
柱后衍生方法也可以对植物和土壤中的草苷 和甲氨 进行测定。利用简单的提取过程,然后利用阳离子交换柱芯进行清除,改进了蔬菜样品的制备过程。
背景 草苷 和甲氨 被强离子交换柱分离。(完全磺酸化,交联的聚苯乙烯, K + /H + 混合模式)。等度分离之后,分析柱被 KOH 溶液再生,然后用洗脱液进行再平衡。 通过两步柱后衍生反应实现荧光检测。第一步,将草苷 被次氯酸盐氧化为氨基乙酸。第二步,氨基乙酸与邻苯二醛和 Thiofluor TM (一种 pH9-10 的硫醇)产生高荧光的异吲哚。 AMPA 不需要第一步的氧化过程便可与 OPA 试剂反应(如图) ; 过氧化会使它产生的荧光减弱。
基本的样品配制 下面是蔬菜和水样品中含有的草苷 的基本样品制备过程。蔬菜的测定方法与 AOAC 的测定过程不同。我们开发了离子交换柱芯,省略了许多繁琐的提取过程,提高了提取的重复性。该柱芯经过本实验室可靠的认证。
蔬菜样品分析 提取: 取去除水分的 25g 匀质样品,加水至 125ml 。尊龙人生就是搏网站搅拌 3-5 分钟,然后离心 10 分钟。将 20ml 水性提取液转移至离心管中,加 15ml 以形成非极性共聚物,振摇 2-3 分钟,离心 10 分钟。转移 4.5mL 上清液至离心管中,加入 0.50mL 酸性改性剂( 16g KH 2 PO 4 , 160mL H 2 O,40mL , 13.4mLHCl ) , 振摇后离心 10 分钟。 根据基质调整方法:蔬菜含大量 1 )水 2 )蛋白质 3 )脂肪 1 ) 因为玉米中含有大量的水,将检测样品量降至 12.5g 2 ) 含有大量蛋白质时加入 100 μ L HCl 至 20mL 的粗提物中,振摇离心 10min 。 3 ) 脂肪含量高的玉米,进行两次二 提取。 阳离子交换提取:转移 1mL 前提取物(含 0.18g 玉米或 0.09 干燥过的玉米)至交换柱中。用 0.7mL 洗提液( 160mL H 2 O , 2.7mL HCl , 40mL )洗脱,弃去洗脱液,重复两次。然后用 12mL 洗提液用圆底烧瓶收集。使用旋转蒸发仪至水浴中恒温 40 ℃蒸发至干燥,或收集于离心管中使用真空旋转蒸发仪。用 2.0mL 洗提液溶解滤渣( 1.5mL 对干躁的玉米)。提取物在蒸发前可在冰箱中保存 7 天。 水样分析 用 0.45 μ m 的滤膜过滤,进样 200-400 μ L 如果草苷 出现分叉峰,在样品瓶中直接滴 2 滴 Restore 溶液。
柱后衍生条件 草苷 分析使用 1954150 分析柱和 1953020 保护柱 柱温: 55 ℃ HPLC 流速: 0.4mL/min HPLC 程序
背景 草苷 和甲氨 被强离子交换柱分离。(完全磺酸化,交联的聚苯乙烯, K + /H + 混合模式)。等度分离之后,分析柱被 KOH 溶液再生,然后用洗脱液进行再平衡。 通过两步柱后衍生反应实现荧光检测。第一步,将草苷 被次氯酸盐氧化为氨基乙酸。第二步,氨基乙酸与邻苯二醛和 Thiofluor TM (一种 pH9-10 的硫醇)产生高荧光的异吲哚。 AMPA 不需要第一步的氧化过程便可与 OPA 试剂反应(如图) ; 过氧化会使它产生的荧光减弱。
基本的样品配制 下面是蔬菜和水样品中含有的草苷 的基本样品制备过程。蔬菜的测定方法与 AOAC 的测定过程不同。我们开发了离子交换柱芯,省略了许多繁琐的提取过程,提高了提取的重复性。该柱芯经过本实验室可靠的认证。
蔬菜样品分析 提取: 取去除水分的 25g 匀质样品,加水至 125ml 。尊龙人生就是搏网站搅拌 3-5 分钟,然后离心 10 分钟。将 20ml 水性提取液转移至离心管中,加 15ml 以形成非极性共聚物,振摇 2-3 分钟,离心 10 分钟。转移 4.5mL 上清液至离心管中,加入 0.50mL 酸性改性剂( 16g KH 2 PO 4 , 160mL H 2 O,40mL , 13.4mLHCl ) , 振摇后离心 10 分钟。 根据基质调整方法:蔬菜含大量 1 )水 2 )蛋白质 3 )脂肪 1 ) 因为玉米中含有大量的水,将检测样品量降至 12.5g 2 ) 含有大量蛋白质时加入 100 μ L HCl 至 20mL 的粗提物中,振摇离心 10min 。 3 ) 脂肪含量高的玉米,进行两次二 提取。 阳离子交换提取:转移 1mL 前提取物(含 0.18g 玉米或 0.09 干燥过的玉米)至交换柱中。用 0.7mL 洗提液( 160mL H 2 O , 2.7mL HCl , 40mL )洗脱,弃去洗脱液,重复两次。然后用 12mL 洗提液用圆底烧瓶收集。使用旋转蒸发仪至水浴中恒温 40 ℃蒸发至干燥,或收集于离心管中使用真空旋转蒸发仪。用 2.0mL 洗提液溶解滤渣( 1.5mL 对干躁的玉米)。提取物在蒸发前可在冰箱中保存 7 天。 水样分析 用 0.45 μ m 的滤膜过滤,进样 200-400 μ L 如果草苷 出现分叉峰,在样品瓶中直接滴 2 滴 Restore 溶液。
柱后衍生条件 草苷 分析使用 1954150 分析柱和 1953020 保护柱 柱温: 55 ℃ HPLC 流速: 0.4mL/min HPLC 程序
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